ГЛАВА 2
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
2.1. Материалы исследования
Обследовано 125 пациентов в возрасте от 29 до 55 лет (средний возраст –
41,7±2,0 года), из них мужчин было 86 (68,8 %), женщин – 39 (31,2 %) с
диагнозом генерализованный пародонтит средней степени тяжести, хроническое
течение.
Инсулиновая недостаточность (сахарный диабет I типа) была отмечена у 61
пациента (48,8 %), в том числе у 23 женщин (37,7 %) и 38 мужчин (62,3 %).
Инсулиновая недостаточность I степени тяжести зарегистрирована у 19 (31,1 %)
пациентов, II степени тяжести – у 26 (42,6 %) пациентов, III степени – у 16
(26,2 %) пациентов. Стадия нестойкой компенсации инсулиновой недостаточности
имела место у всех указанных больных.
Для диагностики пародонтита использовали классификацию Н.Ф. Данилевского
(1994). Диагноз ставили на основании клинических и параклинических
исследований. При опросе пациентов выясняли: начало заболевания, факторы, с
которыми связано его возникновение, динамику течения, учитывали общее состояние
здоровья, аллергологический статус, перенесенные и сопутствующие заболевания,
условия работы, лечился ли раньше пациент по поводу пародонтита, какими
препаратами и с каким эффектом. При осмотре оценивали цвет десны,
распространенность воспаления, консистенцию тканей, подвижность зубов,
проводили рентгенологическое исследование. Состояние тканей пародонта оценивали
по наличию или отсутствию гиперемии и отека десен, пародонтальных карманов,
гноетечения из них, кровотечения при зондировании, а также по наличию над- и
поддесневого зубного камня. Глубину пародонтальных карманов определяли с
помощью градуированного зонда.
Клинический диагноз подтверждали параклиническими тестами: определяли
пародонтальный индекс Russel, который позволяет оценить состояние пародонта у
каждого зуба, папиллярно-маргинально-альвеолярный индекс, позволяющий оценить
распространенность воспаления десны и гигиенический индекс по
Фёдорову-Володкиной, характеризующий гигиеническое состояние. Исходно пациентов
обследовали, регистрировали данные клинических и параклинических методов.
После этого назначали курс местного медикаментозного лечения. Общим для
пациентов всех групп было тщательное удаление зубных отложений, над- и
поддесневого зубного камня со всех поверхностей зуба с последующим полированием
и устранением пунктов травматической окклюзии. Проводили ирригацию
антисептическими средствами, аппликации, введение турунд с антисептиками в
пародонтальные карманы.
Больным, которые вошли в основную группу, назначали препарат «Лисобакт» для
рассасывания по 2 таблетки 3 раза в день в течение 10 дней в сочетании с
приемом амизона (по 250 мг 3 раза в день после еды в течение 7 дней) на фоне
комплексной терапии.
В контрольной группе после удаления местных раздражающих факторов использовали
аппликации спиртового раствора хлорофиллипта и противовоспалительную пасту
(левомицетиновая мазь, метилурациловая мазь, оксид цинка) под парафин.
2.2. Методы исследования
Выраженность воспалительных проявлений в деснах определяли с помощью пробы на
гликоген Писарева-Шиллера. Интенсивность окрашивания десен после обработки
раствором, содержащим кристаллический йод 1,0 г, калия йодид 2,0 г и 40,0 мл
дистиллированной воды, указывала на наличие проявлений хронического воспаления
разной степени (реакции негативная, слабо позитивная и позитивная).
Все больные сахарным диабетом состояли на учёте у эндокринолога по месту
жительства.
Материал (экссудат из зубодесневых карманов) брали с помощью стерильных
бумажных штифтов, которые пропитывались экссудатом на 1 см своей длины, что
позволяло брать одинаковое количество экссудата. Штифт помещали в стерильную
пробирку и немедленно проводили вымывание экссудата 0,5 мл изотонического
раствора натрия хлорид, подогретого до 37?С. Посев для выявления анаэробной
микрофлоры производили немедленно в течение не более чем 2 часов с момента
забора материала на свежеприготовленный коммерческий агар с кровью и одним из
антибиотиков (канамицин, гентамицин); обогащенную полужидкую тиогликолевую
среду; для выявления клостридий материал засевали в 2 пробирки с предварительно
регенерированным печеночным бульоном с наполнителем под маслом, одну из
пробирок после внесения материала прогревали при 80?С в течение 20 минут для
выявления споровых форм. Кроме того, материал засевали в пробирку с
обезжиренным молоком, средой Вильсона-Блера и на кровяной агар.
Для культивирования анаэробных неспорообразующих бактерий использовали
микроанаэростат, заполненный трёхкомпонентной газовой смесью (азот - 80 %,
водород - 10 %, углекислота - 10 %). Для выявления в нативном материале
бактерий рода Prevotella клинический материал просматривали в ультрафиолетовом
свете (люминесцентный микроскоп). Для идентификации анаэробных возбудителей на
четвёртом этапе лабораторного исследования (6-й-7-й день) использовали культуры
анаэробных бактерий, выросших на твердых и полужидких накопительных средах.
Исследуемые культуры идентифицировали до рода и вида по результатам изучения
культуральных, морфологических, биохимических свойств и чувствительности к
антибиотикам. Бактериологический анализ бактероидов, фузобактерий и превотелл
включал микроскопическое изучение нативного патологического материала (окраска
по Граму в модификации Копелова).
Установление родовой принадлежности культур и видовую идентификацию строго
анаэробных условно-патогенных бактерий проводили согласно приказу Министерства
здравоохранения СССР № 535 от 22 апреля 1985 г. «Об унификации
микроб
- Київ+380960830922