ОГЛАВЛЕНИЕ
Введение
1.0 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
1.1 Иммунная система птиц в эмбриональный и постэмбриональный
периоды развития
1.2 Современное состояние, проблемы и перспективы применения
пробиотиков в животноводстве
2.0 СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
2.1 Материал и методы исследований
2.2 Результаты собственных исследований
2.2.1 Иммунитет и его коррекция при амидостомозно-гангулетеракидозном заболевании гусей венгерской белой породы
2.2.1.1 Гематологические показатели при ассоциативной инвазии гусей и их коррекция пробиотиком Иммунобак и цеолитами на фоне дегельминтизации Универмом
2.2.1.2 Состояние естественной резистентности при ассоциативной инвазии гусей и ее коррекция пробиотиком Иммунобак и цеолитами на фоне дегельминтизации Универмом
2.2.1.2.1 Динамика изменения показателя бактерицидной активности сыворотки крови гусей
2.2.1.2.2 Динамика изменения показателя лизоцимной активности сыворотки крови гусей
2.2.1.3 Коррекция показателей Т- и В-систем иммунитета при смешанной инвазии гусей пробиотиком Иммунобак и цеолитами на фоне дегельминтизации Универмом
2.2.1.3.1 Динамика изменения содержания Т-Е-РОК-лимфоцитов, Т-хелперов, Т-супрессоров и В-ЕАС-лимфоцитов в крови гусей
2.2.1.3.2 Динамика изменения содержания Т-Е-РОК и В-ЕАС-лимфоцитов в селезенке гусей
3
2.2.1.3.3 Динамика изменения содержания Т-Е-РОК-лимфоцитов в тимусе гусей 72
2.2.1.3.4 Динамика изменения содержания В-ЕАС-лимфоцитов
в сумке Фабрициуса и гардеровой железе гусей 75
2.2.1.4 Микробно-микологическая экология кишечника и ее коррекция пробиотиком Иммунобак и цеолитами на фоне дегельминтизации Универмом при смешанной инвазии гусей 81
2.2.1.4.1 Динамика изменения содержания в кишечнике гусей нормофлоры: (бифидобактерий, лактобацилл) 81
2.2.1.4.2 Динамика изменения содержания в кишечнике гусей условно-патогенных микроорганизмов (стафилококков, клост-ридий) 87
2.2.1.4.3 Динамика изменения содержания в кишечнике гусей микрогрибов из рода Candida, Aspergillus 94
3.0 ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЙ 101
ВЫВОДЫ 114
ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ 115
БИБЛИОГРАФИЧЕСКИЙ СПИСОК 116
л •
вичной аорте, а также зачатки селезёнки, печени, тимуса и бурсы. Позднее ге-мопоэз индуцируется в костном мозге. Стволовые кроветворные клетки циркулируют по всей кровеносной системе, но места кроветворения ограничиваются только территорией костного мозга и, в меньшей степени, некоторых других кроветворных органов (И.Л. Чертков, А .Я. Фриденштейн, 1972; Metcalf, Moore, 1971).
В течение первой недели инкубации в костном мозгу и селезёнке превалирует гранулоцитопоэз, а в циркулирующей крови появляются гетерофилы и другие лейкоциты (И.М. Карпуть, М.П. Бабина, 1996).
Следует, очевидно, считать, что на первых этапах развития эмбриона основную защитную роль выполняют фагоциты, так как показано, что многие молодые эмбриональные клетки обладают фагоцитарной активностью (Mize-jewski, 1973).
У. Дж. Герберт (1974) считает, что временную защиту цыплёнка во время периода, когда он является наименее иммунокомпетентным, обеспечивают пассивно перенесённые к нему антитела материнской иммунной системы. Этот период начинается приблизительно за 5 дней до овуляции, когда иммуноглобулин G избирательно переносится из материнской системы кровообращения через фолликулярный эпителий в развивающуюся яйцеклетку (желток), окружённую белком, содержащим материнские иммуноглобулины М и А.
По мере развития эмбриона макрофагальная активность сосредоточена в печени, селезёнке, почках, костном мозгу и других участках тканей, богатых клетками ретикулоэндотелиальной системы. Наряду с фагоцитами защитную функцию выполняют авидин, лизоцим и иммуноглобулины, которые также содержаться в яйце (И.А. Болотников, 10.В. Конопатов, 1987; Р.Х. Кармолиев, 1988).
Тимус в эмбриональный период развития закладывается как парный орган, состоящий из 6-7 долек с каждой стороны шеи. Последние две дольки могут заходить в грудную полость. Максимального развития тимус достигает к 3,5-4 месяцу, а затем постепенно атрофируется по достижении полового со-
зревания. Зачатки тимуса появляются на 5-7 день развития, а в начале второй недели инкубационного периода в мезенхиме органа удастся обнаружить ге-моцитобласты (В.Ф. Вракин, М.В. Сидорова, 1984; Kendall, 1980).
Тимус цыплят в эмбриональный и ранний постнатальный периоды лишён В-клеток. Однако, начиная с 9-неделыюго возраста, в тимусе обнаруживаются иммуноглобулин положительные лимфоциты, значит, популяция тимоцитов становится гетерогенной (Potworowski, 1972).
Возрастная изменчивость иммунных свойств тимуса показана для мышей и крыс. При изучении регенерации тимуса у летально облучённых мышей, защищённых введением костномозговых клеток, наблюдается значительное снижение количества предшественников Т-клеток, начиная с 100-недельного возраста и старше. Есть работы, свидетельствующие о качественных изменениях в Т- и В-системах лимфоцитов мышей, приводящих к снижению иммунного потенциала. Отсюда следует, что иммунная система в онтогенезе претерпевает существенные изменения.
Исследования, проведённые на мышах, показали, что отсутствие гуморального иммунного ответа связано с недостатком Т-клеток хелперов в раннем постнатальном периоде (I. Roitt, 1997; С.Л. Janeway et al., 1997).
Следовательно, тимус в этот период играет ключевую роль в развитии гуморального ответа. Аналогичная ситуация имеет место и у цыплят. Миграция Т-лимфоцитов в периферические лимфоидные органы находится на низком уровне до момента вывода цыплят и ещё продолжает сохраняться в течение последующих 4-5дней, после чего резко усиливается (Seto, 1981).
Оценить функциональную связь центральной и периферической лимфоидной ткани можно, рассмотрев их онтогенез и созревание. На ранней стадии жизни куриного эмбриона тимус и фабрициева сумка, как ретикулоэпители-альные ответвления рудиментарной глотки и клоаки инфильтрируются кроветворными стволовыми клетками, происходящими из мезодермы желточного мешка. В новых условиях стволовые клетки дифференцируются в клетки лимфоидного ряда, что соответствует созреванию лимфоцитов тимуса (Т) и
- Київ+380960830922