Влияние экологически безопасного препарата митомина на некоторые показатели эмбрионального и постэмбрионального развития перепелов

СОДЕРЖАНИЕ
ВВЕДЕНИЕ........................................................... 5
ГЛАВА I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.......................................... 8
1.1. Методы воздействия на инкубационные яйца с цедыо стимуляции эмбриогенеза...................................................... 8
1.1.1. Физические методы стимуляции эмбриогенеза птицы............. 8
1.1.2. Химические способы стимуляции эмбрионального развития
птицы.............................................................. 9
1.2. Биологическое действие янтарной кислоты и ее солей, их влияние
на организм человека, животных и птицы........................... 13
1.3. Аскорбиновая кислота (витамин С).............................. 23
1.4. Сукцинатсодержащий препарат Митомин........................... 24
ГЛАВА 2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ.................................. 26
2.1. Материалы и методы исследований............................... 26
2.2. Результаты исследований....................................... 32
2.2.1. Первая серия экспериментов. Влияние иредынкубациопной обработки яиц растворами митомина на некоторые показатели эмбрионального и постэмбрионального развития перепелят........... 32
2.2.1.1. Опыт 1 (рекогносцировочный)............................... 32
2.2.1.1.1. Показатели биоконтроля инкубации........................ 32
2.2.1.1.2. Показатели динамики живой массы и сохранности молодняка ............................................................. 35
2.2.1.2. Опыт 2.................................................... 36
2.2.1.2.1. Показатели биоконтроля инкубации........................ 37
2.2.1.2.2. Показатели живой массы и молодняка...................... 39
2.2.1.2.3. Морфологические показатели некоторых внутренних органов суточных перепелят........................................... 42
2.2.2. Вторая серия экспериментов. Эффективность предынкубацион-ной обработки яиц растворами митомина и его составляющими 43
э
2.2.2.1. Опыт 3............................................................ 43
2.2.2.1.1. Показатели биоконтроля инкубации............................... 44
2.2.2.1.2. Показатели живой массы молодняка............................... 47
2.2.2.1.3. .Морфометрические показатели исследования некоторых
внутренних органов суточных перепелят...................................... 48
2.2.2.2. Опыт 4............................................................ 49
2.2.2.2.1. Показатели биоконтроля инкубации............................... 50
2.2.2.2.2. Показатели живой массы молодняка............................... 53
2.2.2.23. Морфометрические показатели исследования некоторых 53
внутренних органов суточных перепелят..................................
2.2.2.З. Опыт 5............................................................ 54
2.2.2.3.1. Показатели биоконтроля ибкубации............................... 55
2.2.2.3.2. Показатели живой массы молодняка............................... 58
2.2.2.3.3. Морфометрические показатели исследования некоторых внутренних органов суточных перепелят...................................... 58
2.2.2.3.4. Гистологические исследования некоторых иммуиокомпе-тентных органов перепелят опытных и контрольной групп...................... 59
2.2.2.3.4.1. Тимус (вилочковая железа)..................................... 59
2.2.2.3.4.2. Фабрициева сумка.............................................. 63
2.2.2.3.4.3. Селезенка..................................................... 68
2.2.3. Третья серия экспериментов. Влияние алиментарного применения митомина на яйценоскость взрослой птицы и качество яиц ........................................................................... 72
2.2.3.1. Опыт 6............................................................ 73
2.2.3.1.1. Показатели яйценоскости......................................... 73
2.2.3.1.2. Показатели сохранности и падежа поголовья....................... 76
2.2.3.1.3. Некоторые морфомстрические показатели исследования яиц 77
2.2.3.1.4. Биохимические и гематологические показатели..................... 81
3
может быть связан с вмешательством в функционирование надпочечников путем прямой или опосредованной адренокортнкотропином активации янтарной кислотой либо активации через вторичные сигналы от органов -«мишеней». Данные исследований (147, 148), дают основание полагать, что имеется более чувствительный механизм действия препарата: влияние ЯК в дозах 0,5-1,0 мг на кг массы тела ив 10 мкг концентрации in vitro не может быть расценено иначе, как сигнальное. Возможно, существуют мембранные рецепторы или иные центры связывания органических кислот, в частности продуктов анаэробного распада углеводов - лактата и сукцината, так что появление этих кислот может служить сигналом для других тканей, органов и управляющих систем о наличии, например участков кислородного голодания (50,49).
Однако до последнего времени считалось, что через неповрежденные мембраны экзогенный сукцииат не проникает и , следовательно, не может быть окислен (107), (107) с целью доказательства возможности использования экзогенного сукцината в условиях целого организма в опытах на крысах с лечением сукцинатом было выявлено, что в покое уже через 10 минут в выдыхаемым ССЬ обнаруживалась метка. При нагрузке происходила активация окисления экзогенного сукцината. Результаты анализа тканей показали , что больше всего меченого сукцината в печени и плазме крови, несколько меньше в почках, сердце и скелетной мускулатуре. Это свидетельствует о том, что экзогенный сукцииат может проникать из желудочпо - кишечного тракта в кровь, из крови в ткань и там подвергаться окислительному распаду до СО2, который выводится с выдыхаемым воздухом. Следовательно, экзогенный сукцинат можно использовать как субстрат энергетического обмена не только in vitro, но и в условиях живого организма (108). Исследования на белых мышах и крысах показали (165), что введение сукцината калия в концентрации 25 мг/кг внутрибрюшиипо и 100 мг/кг перорально в 1,5 раза ускоряло выход животных из гипотермии. Это сопровождалось активацией дыхания
15
митохондрий. Следовательно, дополнительный приток субстрата может приводить к увеличению термогенной активности. Опыты показали, что в контрольной группе нарастание температуры имеет линейный характер и нормальная температура тела устанавливается через 2,5 часа. А при введении сукцината повышение температуры до нормы происходит в течении 1,5-2 часов (164). Янтарная кислота обладает антигипоксическими и антиоксидант-1(ым действием, поддерживает транспорт кальция, устраняет метаболический ацидоз, стимулирует стероидогенез, ослабляет токсическое действие ряда лекарственных веществ.
Исследования ряда авторов (5,7) показали, что применение ЯК предотвращает тяжелое поражение организма, в частности почек при гипервитами-нозе Д. При одновременном применении витамина Д и ЯК у животных наблюдалась положительная динамика биохимическтх и морфологических показателей. При их применении содержание общих липидов в плазме крови возросло в 1,1 раза, в печени и почках в 1,3 раза, причем разница достоверна. Одновременно наблюдалось нарастание аптиокислительной активности плазмы крови в 1,1 раза по сравнению с группой, в которой применяли вита-мин Д (5,7).
В результате морфологических исследований установлено, что ткань почки более сохранена при сочетании применения витамина Д и ЯК, чем в группе животных с гипервитаминозом Д. Отсутствуют крупные отложения кальция, нет зон некроза, менее выражены признаки белковой дистрофии в эпителии почечных канальцев. Применение ЯК приводит к защите внутриклеточных и клеточных мембран почки, сохранность клеточных органелл, в частности митохондрий, способствует нормализации процессов окисления липидов. В опытах было выявлено благоприятное действие препарата при цитохимическом исследовании крови у детей с проявлениями экссудативного диатеза. У наблюдаемых замечали ослабление аллергического воспаления, возможно, за счет воздействия на энергетический обмен клеток (92). Янтар-
16