Коррекция иммунного статуса цыплят-бройлеров прополисом, пробиотиком, цеолитами и их композиционными формами

2
Оглавление
Стр.
Введение 4
1.0 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 8
1Л Особенности иммунитета птиц 8
1.2 Иммунобиотики в ветеринарной практике 24
2.0 СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ 36
2.1 Материал и методы исследований 36
2.2 РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ КОРРЕКЦИЯ ИММУННОГО СТАТУСА ЦЫПЛЯТ-БРОЙЛЕРОВ ПРОПОЛИСОМ, ПРОБИОТИКОМ «ИММУНОБАК», ЦЕОЛИТАМИ, ОТРУБЯМИ И ИХ КОМПОЗИ1 [ИОННЫМИ ФОРМАМИ 38
2.2.1 Влияние прополиса, пробиотика «Иммунобак», цеолитов, отрубей и их композиционных форм на состояние естественной резистентности птиц 38
2.2.1.1 Динамика бактерицидной активности сыворотки крови 38
2.2.1.2 Динамика лизоцимной активности сыворотки
крови ' 42
2.2.2 Влияние прополиса, пробиотика «Йммунобак», цеолитов, отрубей и их композиционных форм на показатели Т- и
В- систем иммунитета 45
2.2.2.1 Динамика Т-Е-РОК- лимфоцитов, Т- хелперов,
Т- супрессоров, В-ЕАС-лимфоцитов в крови 45
2.2.2.2 Динамика Т-Е-РОК и В-ЕАС-лимфоцитов в селезенке 61
2.2.2.3 Динамика Т-Е-РОК-лимфоцитов в тимусе 70
2.2.2.4 Динамика В-ЕАС-лимфоцитов в сумке Фабрициуса 71
2.2.2.5 Динамика Т-Е-РОК и В-ЕАС-лимфоцитов в гарде-ровой железе 72
2.2.3 Влияние прополиса, пробиотика «Иммунобак», цеолитов, отрубей и их композиционных форм на иммунную морфо-
3
л о гию костного мозга 78
2.2.3.1 Динамика клеток зернистого ростка лейкоцитов 78
2.2.3.2 Динамика клеток эритроидного ростка 82
2.2.3.3 Динамика лимфоидных клеток 86
2.2.4 Естественный микробиоценоз кишечника цыплят-
бройлеров и его коррекция прополисом, пробиотиком
«Иммунобак», цеолитами, отрубями и их композиции-
онными формами 90
2.2.4.1 Влияние прополиса, пробиотика «Иммунобак» цеолитов, отрубей и их композиционных форм на динамику нормо-флоры кишечника 90
2.2.4.2 Влияние прополиса, пробиотика« Иммунобак», цеолитов, отрубей и их композиционных форм на динамику условно- патогенных микроорганизмов 100
3.0 ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЙ 123
Выводы 132
Практические предложения 134
Библиографический список 135
13
вообращения через фолликулярный эпителий в развивающуюся яйцеклетку (желток), окружённую белком, содержащим материнские иммуноглобулины М и А.
По мере развития эмбриона макрофагальная активность сосредоточена в печени, селезёнке, почках, костном мозгу и других участках тканей, богатых клетками ретикулоэндотелиальной системы. Наряду с фагоцитами защитную функцию выполняют авидин, лизоцим и иммуноглобулины, которые также содержаться в яйце (Н. Г. Хрущов, 1984; И. А. Болотников, Ю. В. Конопатов, 1987; P. X. Кармолиев, 1988; Warren, Borsos, 1959).
Тимус в эмбриональный период развития закладывается как парный орган, состоящий из 6- 7 долек с каждой стороны шеи. Последние две дольки могут заходить в грудную полость. Максимального развития тимус достигает к 3,5-4 месяцу, а затем постепенно атрофируется по достижении полового созревания. Зачатки тимуса появляются на 5-7 день развития, а в начале второй недели инкубационного периода в мезенхиме органа удаётся обнаружить гемоцитобласты (В. Ф. Вракин, М. В. Сидорова, 1984; Kendall, 1980).
Тимус цыплят в эмбриональный и ранний постнатальный периоды лишён В-клеток. Однако, начиная с 9-недельного возраста, в тимусе обнаруживаются иммуноглобулин положительные лимфоциты, значит, популяция тимоцитов становится гетерогенной (Potworowski, 1972).
Возрастная изменчивость иммунных свойств тимуса показана для мышей и крыс (Райцина и др., 1977). При изучении регенерации тимуса у летально облучённых мышей, защищённых введением костномозговых клеток, наблюдается значительное снижение количества предшественников Т-клеток, начиная с 100-недельного возраста и старше. Есть работы, свидетельствующие о качественных изменениях в Т- и В-системах лимфоцитов мышей, приводящих к снижению иммунного потенциала. Отсюда следует, что иммунная система в онтогенезе претерпевает существенные изменения.
14
Исследования, проведённые на мышах, показали, что отсутствие гуморального иммунного ответа связано с недостатком Т-клеток хслпсров в раннем постнатальном периоде (Chison, Golub, 1972).
Следовательно, тимус в этот период играет ключевую роль в развитии гуморального ответа. Аналогичная ситуация имеет место и у цыплят. Миграция Т-лимфоцитов в периферические лимфоидные органы находится на низком уровне до момента вывода цыплят и ещё продолжает сохраняться в течение последующих 4-5дней, после чего резко усиливается (Н.
Н.Сиротинин, 1981; Seto, 1981).
Оценить функциональную связь центральной и периферической лимфоидной ткани можно, рассмотрев их онтогенез и созревание. На ранней стадии жизни куриного эмбриона тимус и фабрициева сумка, как ретикуло-эпителиальные ответвления рудиментарной глотки и клоаки инфильтрируются кроветворными стволовыми клетками, происходящими из мезодермы желточного мешка. В новых условиях стволовые клетки дифференцируются в клетки лимфоидного ряда, что соответствует созреванию лимфоцитов тимуса ( Г) и лимфоцитов фабрициевой сумки (В). Основная иммунологическая функция тимуса и сумки Фабрициуса, определяющая их предназначение как основных лимфоидных органов, это выработка лимфоцитов, которые на поздних стадиях эмбрионального развития и в раннем послевыводном периоде жизни заселяют периферические лимфоидные ткани и обеспечиваю! их иммунологическую реактивность (У. Дж. Герберт, 1974; Meloen R. II., 1995).
Лимфоциты, образованные в фабрициевой сумке (В), различаются как в самой сумке, так и на периферии по присутствию на их поверхности иммуноглобулина. При стимуляции антигеном В-клетки энергично делятся и их многочисленные поколения дифференцируются в плазматические клетки, вырабатывающие антитела, а другие остаются клетками памяти, которые способны быстро отреагировать на внезапную повторную встречу с этим же