СОДЕРЖАНИЕ
ВВЕДЕНИЕ.............................................................5
I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.................................................10
1 Л.Этиология эндометритов крупного рогатого скота..................10
1.2.Эпизоотологические особенности послеродовых эндометритов
1 І і : І 1
крупного рогатого скота.............................................17
1.3.Лечебно-профилактические мероприятия при эндометритах крупного рогатого скота......................................................23
1.4. Пробиотические препараты.......................................26
1.4.1 .Общая характеристика, классификация, требования к пробиотикам.26
1.4.2. Механизм действия пробиотиков................................36
1.5.Применение пробиотиков в ветеринарии и медицине.................45
1.5.1.Перспективность использования пробиотиков для терапии и профилактики эндомегритов крупного рогатого скота...................49
П. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ..........................................52
2.1. Материалы и методы исследований................................52
2.2. Технологический цикл выращивания крупного рогатого скота в специализированных хозяйствах Ленишрадской
области.............................................................54
2.3. Результаты изучения эпизоотологических данных по послеродовым патологиям крупного рогатого скота в ЗАО ПЗ «Гражданский» и ЗАО «Предпортовый»......................................................57
2.4. Результаты изучения клинических проявлений эндометритов у коров...............................................................61
2.5. Результаты изучения микрофлоры полового тракта коров...........63
2.6.Чувствительность к антимикробным препаратам культур, выделенных от коров............................................................65
2.7.Результаты определения гомеостаза коров, больных послеродовым эндометритом...........................................................67
2.8.Характеристика пробиотиков.........................................69
2.8.1.Изучение культурально-морфологических признаков штаммов пробионтов, входящих в состав пробиотиков......................:.......69
2.8.2. Антагонистические свойства пробиотиков..........................71
2.8.2.1.Антагонистические свойства пробиотиков по отношению к типовым штаммам представителей патогенной и условно-патогенной микрофлоры.............................................................71
2.8.2.2. Антагонистическая активность пробиотиков по отношению к патогенной и условно-патогенной микрофлоре, выделенной при
послеродовом эндометрите крупного рогатого скота.......................76
2.8.3.Определение чувствительности пробиотиков к антибиотикам 80
2.8.4.Определение количества жизнеспособных клеток и значения pH в пробиотиках при хранении...............................................83
2.9.Производственные испытания по применению пробиотиков для
профилактики и лечения эндометритов крупного рогатого скота............85
2.9.1.Отработка доз и схем применения пробиотиков в лаботаторно-7 производственных опытах..............................................85
2.9.2.Результаты использования пробиотических препаратов для профилактики эндометритов крупного рогатого скота......................88
2.9.3.Результаты изучения клинических проявлений при терапии послеродовых эндометритов с использованием пробиотиков.................91
2.9.4. Результаты изучения микробной обсемененности матки, коров при терапии послеродовых эндометритов с использованием пробиотиков 95
2.9.5.Результаты изучения иммунологических показателей крови коров при
применении пробиотиков.................................................97
2.Ю.0итимизация системы лечебно-профилактических мероприятий при эндометритах коров с использованием пробиотиков.......................100
14
Г.А. Ноздрин (1999), исследуя цервикальную слизь у 60 больных эндометритами и 8 клинически здоровых коров, выделил 84 штамма условно-патогенных микроорганизмов из групп стафилококков, стрептококков, кишечной палочки и протея.
И.Н. Зюбиным (1988) при исследовании содержимого матки коров, больных послеродовыми эндометритами (в динамике болезни), был выделен септический диплококк в ассоциации с бактериями групп протея и синегнойной палочкой в 60,2 % случаев, белым стафилококком в 18,1%, золотистым стафилококком и кишечной палочкой в 5% случаев.
Микробиологическими исследованиями проб содержимого матки у коров при эндометритах в условиях хозяйств Чувашии во всех случаях установлено наличие микрофлоры (Григорьева Т.Е., 1988). Состав микрофлоры, как правило, был разнообразным и состоял из стафилококков белого и желтого, кишечной палочки, вульгарного протея, пептострептококков и сапрофитной микрофлоры. Среди них превалировали стафилококки (26,3 %), кишечная палочка (23 %), споровая почвенная микрофлора (38,9 %), реже протей (12,1 %) и на прочие условно-патогенные бактерии приходилось до 2,4 %.
По результатам бактериологического исследования секрета из матки от коров, больных острым послеродовым эндометритом (Рубцов В.И. 2004), стрептококки выделялись в 30% случаев, стафилококки - в 36,6%, кишечная палочка - в 20,0%, смешанная микрофлора - в 13,3% случаев.
И.Н. Зюбин (1998) приводит данные, что в 88,7 % случаев были изолированы различные условно-патогснпыс бактерии и грибы от коров с клиникой острого и хронического послеродового метритов. Из 116 штаммов выделенных микроорганизмов 77,4% обладали высокой степенью патогенности для лабораторных животных (гибель белых мышей наступала через 9-18 часов после заражения). 11ри этом наиболее высокую патогенность отмечали в случаях ассоциации бактерий и грибов. В этом исследовании E.coli была обнаружена в 26,25% случаев, бактерии рода Staphylococcus - в 13,75%,
15
бактерии рода Streptococcus - в 13,75%, Proteus - в 8,75%, грибы разных родов были обнаружены в 15% случаев.
По данным Ю.Г. Попова (2005) из цервикальной слизи больных животных было выделено 44 изолята бактерий. Изолированные бактерии были отнесены к следующим родам: к Escherihia - 13, Staphylococcus - 11, Streptococcus — 5, Proteus — 7, Pseudomonas - 6, к другим микроорганизмам — 2 изолята. В 80% случаев были выделены различные ассоциации микробов и лишь в 20% выделили монокультуры.
Состав микрофлоры половых путей у коров в послеродовом периоде можно соотнести с составом микрофлоры матки у женщин в послеродовом периоде. R.S. Gibbs и соавт. (1987) отметили у женщин существенное увеличение содержания Bacteroides, E.coli, Streptococcus группы В и D, являющихся условно-патогенными микроорганизмами. Аналогичные данные относительно E.coli были получены M.L. Yonekura и соавт. (1988). Исследования свидетельствуют о том, что в процессе беременности обнаруживается некоторое угнетение влагалищной микрофлоры (за исключением лактобактерий), а в послеродовом периоде повышается численность грамотрицательных факультативных палочек (Цвслсв Ю.В., КочеровецВ.И., 1995).
Спорным остается вопрос об инфицировании микроорганизмами матки здоровых коров в послеродовой период. Д.В. Губанов (2001) установил, что количество условно-патогенных микроорганизмов в содержимом матки быстро увеличивается в течение первых семи дней после отела (достигая на 7-й день 184,8 млн/мл), а затем к 14-15 дню снижается. Позднее аналогичные данные были получены O.IO. Леденевой (2002) при исследовании маточных выделений от коров с нормальным течением послеродового периода.
В.И. Рубцов (2004) сообщает, что максимальное обсеменение матки микрофлорой у больных послеродовым эндометритом коров наблюдается на 7-10-й день после отела, когда в 1 мл содержимого матки насчитывалось от 5 до
6,5 млн. бактерий. В первые 3-7 дней после родов чаще обнаруживали
>
- Київ+380960830922