2
СОДЕРЖАНИЕ
1. ВВЕДЕНИЕ.......................................................4
2 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ................................................9
2.1. Жизненный цикл токсоплазм и их эпизоотическая опасность для сельскохозяйственных животных...................................9
2.2 Эпизоотологический и серологический мониторинг токсоплазмоза кошек........................................................20
2.3 Семиотика токсоплазмоза кошек..............................26
2.4 Диагностика токсоплазмоза..................................28
2.4.1 Серологическая диагностика............................28
2.4.2. Паразитологическая диагностика токсоплазмоза.........31
2.4.3. Прямое микроскопирование.............................32
2.4.4 Выделение токсоплазм методом биопробы.................33
2.4.5 Паразитологический дифференциальный диагноз...........34
2.4.6 Полимеразная цепная реакция...........................36
2.4.7 Реакция флуоресцирующих антител.......................40
2.5 Ферментная система: гиалуроновая кислота - гиалуронидаза 43
2.6Лечение животных при токсоплазмозе..........................47
2.7 Заключение.................................................51
3. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ......................................53
3.1 Материалы и методы исследования ...........................53
штаммы возбудителей............................................53
3.2 Результаты собственных исследований........................63
3.2.1 Клииико-эпизоотологический мониторинг токсоплазмоза
кошек.......................................................63
3.2.2.Жизненный цикл токсоплазм.............................64
3.2.3 Сравнительное изучение штаммов «КН», «3»..............74
3
3.2.4 Устойчивость и восприимчивость лабораторных животных к
различным дозам токсоплазм.............................76
3.2.5 Изучение инвазивных свойств ооцист токсоплазм....78
3.2.6. Эпизоотическая опасность ооцист токсоплазм для животных80
3.2.7. Экспериментальный токсоплазмоз кошек............82
3.2.8.Сравнителыюе изучение реакции флуоресцирующих антител, полимеразной цепной реакции и копрологического метода исследования на токсоплазмоз................89
3.2.9 Опыт по химиотерапии и химиопрофилактике кошек при токсоплазмозе......................................90
3.2.10 Изучение токсических свойств химкокцида.........92
3.2.11 Кумулятивные свойства химкокцида................96
4. ОБСУЖДЕНИЕ...............................................99
5. ВЫВОДЫ..................................................105
6. РЕКОМЕНДАЦИИ ПО ИСПОЛЬЗОВАНИЮ НАУЧНЫХ ВЫВОДОВ.. 107
7. ЛИТЕРАТУРА..............................................109
8. ПРИЛОЖЕНИЕ..............................................129
12
одинаковую толщину, а содержимое последней представляло собой слабогранулированную массу. Через 3 недели при комнатной температуре внутри ооцисты развивались спороцисты размерами 3x7 мкм (М.Зііш & аі.,1969; ІРгепкеІ еі аі., 1970). На 3-5-й день в отдельных спороцистах появляются тельца, сильно преломляющие свет - спорозоиты. Внутри каждой спороцисты на срезе наблюдали 4 спорозоита, один конец которых был удлинённым. Цикл развития токсоплазм в кишечнике кошки приведены на рисунок 3.
Рисунок 3. Цикл развития токсоплазм в кишечнике кошки (А) и во внешней среде (В): 1 .-спорозоит; 2-4 -развитие шизонтов; 5-мерозоиты; 6-развитие гамет; ба - развитие микрогаметы; 7-микрогаметы; 8-зигота (ооциста); 9-ооциста иеспорулированиая, вышедшая из организма; 10- ооциста со спороцистой; 11-ооциста со спорозоитами.
ЗЛиЪеу & а1. (1970) отметили выделение токсоплазм с фекалиями у 28 из 29 взрослых кошек с отрицательными результатами в РСФ, у 7 из 12 кошек с положительной РСФ (реакция Сабин-Фельдмана). Фекальные формы токсоплазм были введены перорально мышам, хомякам, собакам и кошкам. У кошек в РСФ отмечали наличие антител в титре 1:100 (через 1
13
месяц); у собак, мышей и хомяков обычно наблюдали 10-кратное, против нормы, повышение титра антител. В дальнейших исследованиях (ЮиЬеу а а1., 1997) было показано, что кошки, съевшие ткань, содержащих брадизоиты, выделяли ооцисты при коротком латентном периоде, в то время как кошки, получившие ткань мышей, содержащих тахизоиты не выделяли ооцисты в течение 3-х недель. Более подробно данные по этому вопросу изложены ниже.
По поводу выделения кошками ооцист с фекалиями нет единого мнения, в частности по данным В. ВеИутег е1 а1. (1973), их выделение из организма кошек отмечали в течение 14 дней, по другим источникам - 9-20 дней (У.\Уа11асе, 1973). При этом следует также отметить, что сроки появления ооцист в фекалиях кошек зависят от того, какая инвазионная стадия проглатывается кошкой - цистозоит (в цисте), эндозоит (в псевдоцисте) или спорозоит (в ооцисте). После проглатывания кошкой цистозоитов препатентный период составляет 3-10 дней, эндозоитов -свыше 19 дней, спорозоитов - свыше 20 дней (ЮиЬеу, 1977).
По данным И.Г.Галузо и др. (1970, 1971), из 37 кошек разного возраста, которым перорально вводили цисты токсоплазм, выделение ооцист отмечали у 35. У взрослых кошек препатентный период составлял 2-4 дня, чаще 5-6 дней; патентный - от 2 до 7 дней.
По данным этих исследователей, в опытах использовали 7 авирулентных штаммов токсоплазм, заметной разницы в образовании зигоцист, в зависимости от штамма, не отмечено; заражение трофозоитами токсоплазм (штамм «ЯН») алиментарным путём котят не приводило к выделению зигоцист. При скармливании трупов белых мышей выделение зигоцист наблюдали через несколько дней, и оно продолжалось 3-7 дней. Кроме кошек, авторы в своих опытах использовали собак, корсаков, хорьков, лисиц, кроликов, морских свинок, волчат, белых крыс, ушастых ежей и несколько видов птиц. Как сообщали И.Г.Галузо и др. (1970, 1971), попытки воспроизвести эндогенное половое развитие токсоплазм в
- Київ+380960830922