ГЛАВА 2
Материал и методы исследований
2.1. Материал экспериментальных исследований
Эксперименты по изучению влияния тока различной полярности малой силы на течение раневого процесса при расположении активных электродов в паравульнарной (околораневой) клетчатке проводились в виварии; бактериологические, цитохимические и иммунологические исследования - на кафедре микробиологии, вирусологии и иммунологии Крымского медицинского института им. С.И.Георгиевского.
Экспериментальное исследование выполнено на 60-ти белых беспородных крысах самцах массой 200-230 граммов, разделенных на 3 группы, по 20 особей в каждой. До начала эксперимента все животные выдерживались в виварии под наблюдением в течение месяца, для адаптации к новым условиям и исключения больных особей.
Экспериментальные раны моделировались по общепринятой методике [189]. Под эфирным наркозом, на предварительно выбритом участке в межлопаточной области животного по шаблону скальпелем иссекали кожно-фасциальный лоскут площадью 300 мм2, глубиной до мышц. Раны контаминировались инъекционно под перимизий мышц 0,2 мл суточной культуры патогенного золотистого стафилококка (штамм № 209-Р, выращенный на сахарном агаре, смытый изотоническим раствором натрия хлорида с доведением концентрации бактериальной суспензии до необходимой - 109 микробных клеток в 1 мл). Концентрацию микроорганизмов подбирали по стандарту мутности на 10 ЕД. Данная доза является достаточной для развития гнойно-воспалительного процесса [193]. Раны закрывали стерильными марлевыми салфетками, которые фиксировали трубчатым бинтом.
К 3-м суткам послеоперационного периода формировались гнойные раны: дно и стенки которых были представлены некротическими тканями с гнойным налетом; края отечны, инфильтрированы, отделяемое умеренное гнойное. Животные становились вялыми, малоподвижными, наблюдалась тахикардия и тахипное, потери массы составляли до 15 %. С 4-х суток было начато лечение ран. В зависимости от объема проводимого лечения животные были распределена на 3 группы.
По экспериментальным группам животные были распределены, как показано в таблице .2.1.
Таблица .2.1.
Распределение животных по экспериментальным группам
ГРУППАКол-во
животныхОбработка раны
производиласьВид дополнительного
воздействия
20
0,02% р-р фурациллина
--
II
20
0,02% р-р фурациллина+ паравульнарная электростимуляция током положительной полярности
III
20
0,02% р-р фурациллина+ паравульнарная электростимуляция током отрицательной полярности
Паравульнарная электростимуляция проводилась 1 раз в сутки по 1 часу путем подачи постоянного тока силой 20 мкА к активным электродам введенным параллельно длиннику раны в паравульнарные ткани. В качестве электродов использовались акупунктурные иглы. Ток подавался с помощью аппарата "Поток-1". Пассивный электрод в виде свинцовой пластины площадью 300 мм2 через марлевую салфетку, смоченную изотоническим раствором, с помощью трубчатого бинта фиксировался на здоровом участке кожи спины крысы. Животные во время процедур не проявляли признаков беспокойства и агрессии.
Таким образом, сравнивая течение раневого процесса в I, II и III группах мы имели возможность изучить влияние на динамику раневого процесса постоянного тока малой силы положительной и отрицательной полярности при расположении активных электродов в паравульнарной клетчатке.
Перевязки производились дважды в сутки с 4-го дня. Забор материала для исследований, а также планиметрию ран осуществляли через день. Состояние неспецифической резистентности, отражающее репаративные процессы в гнойной ране, оценивали по фагоцитарной активности, данным НСТ-теста и активности миелопероксидазы нейтрофильных гранулоцитов периферической крови и раневого отделяемого. Забор периферической крови осуществляли из хвостовых вен крыс. Раневые отпечатки готовили по методу М.П.Покровской и Н.С.Макарова [153]. РН-метрию раневого отделяемого гнойных ран осуществляли индикаторной бумагой [76]. Планиметрические исследования площади ран производили по методике Л.Н.Поповой [153].
2.2. Характеристика клинического материала
Разработанные устройства применялись нами для закрытия ран после иссечения флегмон ягодицы, бедра, лигатурных свищей, эпителиальных копчиковых ходов, после ампутации бедра, при эвентрации, а также при лечении разлитого гнойного перитонита методом лапаростомии. Распределение больных по нозологии представлено в таблице 2.2.
Таблица 2.2.
Распределение больных, в лечении которых использовались устройства для закрытия ран по нозологии
ПатологияКоличество больных1. Флегмона ягодичной области32. Флегмона бедра13. Лигатурные свищи84. Состояние после ампутации бедра25. Эвентрация46. Разлитой гнойный перитонит117. Эпителиальный копчиковый ход33ВСЕГО62
Сравнительное исследование выполнено на основе анализа результатов лечения 136 больных с нагноительными заболеваниями крестцово-копчиковой области, лечившихся в хирургических отделениях 6-й и 7-й городских больниц г. Симферополя с 1989 года. Мы посчитали возможным объединить в эту группу больных с острым воспалением эпителиального копчикового хода и больных с хроническим эпителиальным копчиковым ходом в стадии гнойного воспаления (по классификации Ю.В.Дульцева, В.Л.Ривкина (1988)), поскольку по мнению многих авторов, к данным категориям пациентов применима единая тактика хирургического лечения [49, 57, 64].
В зависимости от способа радикального хирургического лечения больные были разделены на 2 группы.
I группа (33 больных) - составили пациенты, которым хирургическое лечение производилось предлагаемым методом, когда рана после радикальной операции закрывалась с помощью устройства для закрытия ран и в послеоперационном периоде проводилась паравульнарная (околораневая) биоэлектростимуляция.
II группа (103 больных) - составили пациенты, которым радикальное хирургическое лече