2
ОГЛАВЛЕНИЕ
стр.
1. Введение...................................................... 3
2. Обзор литературы.............................................. 7
2.1 Виды микобактерий и их патогенность.......................... 7
2.2. Классификация микобактерий............................... 21
2.3. Патогенность и вирулентность нетуберкулезных микобактерий.................................................. 29
2.4. Методы лабораторной диагностики
туберкулеза животных............................................ 33
2.4.1. Бактериоскопический...................................... 35
2.4.2.Культвирование микобактерий на
питательныйсредах .............................................. 37
2.4.3. Биологическая проба на лабораторных
животных........................................................ 42
2.4.4. Патоморфологический метод исследования.................... 46
2.4.5. Молекулярно-генетические исследования.................... 51
2.5.3аключепие.................................................. 56
3. Собственные исследования..................................... 60
3.1. Материалы и методы......................................... 60
3.2. Результаты исследований.................................... 65
3.2.1. Результаты исследований биоматериала крупного рогатого скота, овец, свиней, диких животных и
объектов внешней среды на наличие микобактерий.................. 65
3.2.1.1.Результаты изучения частоты выделения культур микобактерий из объектов внешней среды.......................... 65
3.2.1.2.Изучение частоты выделения микобактерий
из биоматериала животных......................................... 67
3.2.2. Изучение культурально-морфологических и биохимических свойств выделенных
культур микобактерий............................................. 75
3.2.3. Результаты изучения патогенности
нетуберкулезных микобактерий для морских свинок................. 78
3.2.4.Результаты изучения патогенности М.Ыпчб, М.аушт, М.Бсгоййасеит и М.йэгипШт
для белых мышей............................................... 105
3.2.5.Результаты изучения патогенности М.капБаБп,
М.БСгоййасеит для овец в сравнении с М.Ымб,
М.шЬегсик^э и М.аушт............................................ 108
4. Обсуждение результатов исследований......................... 116
5. Выводы...................................................... 127
6.Практнческие предложения..................................... 128
7.Список использованной литературы.............................. 129
1. ВВЕДЕНИЕ
Одной из ведущих, наиболее сложных и экономически значимых проблем в инфекционной патологии животных является туберкулез. В начале XXI века эпизоотическая обстановка в России, несмотря на тенденцию улучшения в целом, остается напряженной. Экономический ущерб от туберкулеза крупного рогатого скота за последние 45 лет в Российской Федерации превысил 85 млрд. рублей, при этом животноводческая отрасль потеряла около 6 млн. голов крупного рогатого скота, 25,3 млн. тонн молока, 1,6 млн. тонн мяса и 3,5 млн. голов приплода (Ю.И.Смолянинов, 2005).
Решающая роль в системе противоэпизоотических мероприятий при туберкулезе животных принадлежит диагностике. Методы и средства диагностики туберкулеза достаточно разнообразны, разработка и совершенствование их продолжается со времен открытия возбудителя.
Основным методом выявления зараженных возбудителем туберкулеза животных является внутрикожная туберкулиновая проба. В некоторых стадах при убое реагировавших на туберкулин животных обнаруживают туберкулезоподобные патологические изменения. В таких случаях эпизоотический статус хозяйства определяется по результатам бактериологичекого исследования биоматериала от реагировавших на туберкулин животных ( Н.П.Овдиенко, А.Х.Найманов, В.А.Ведерников, 2002).
При бактериологичеком исследовании с использованием биопробы у морских свинок иногда обнаруживают незначительные узелковые изменения, которые затрудняют определение вида возбудителя туберкулеза. Некоторые исследователи склонны объяснять возникновение таких изменений у морских свинок с инфицированностыо животных нетуберкулезными (атипичными) микобактериями, роль которых в патологии человека, сельскохозяйственных и лабораторных животных недостаточно изучена.
через 14 и более дней инкубации при 37°С, со временем образуется желтый пигмент. Оптимальная температура роста 40-45°С.
Существует мнение, что M.xenopi иногда вызывает хронические заболевания легких и урогенитального тракта, но чаще выделяют из секретов человека не связывая их с заболеванием (Marks and Schwabacher, 1965; Engbaek et al., 1967).
M.gastri. Открыт и описан в 1966г. Wayne. Выделен из промывных вод желудка человека. Также обнаружен в почве (Wolinsky and Rynearson,1968). Сходны с непигментными штаммами M.kansasii.
Через 7 дней инкубации на яичных средах при температуре 37°С появляются колонии с гладкой или шероховатой поверхностью белого цвета, температурный режим 25-40°С.
При заражении морских свинок у последних на месте введения образуется язва.
М.terrae. Выделены Richmond и Cummind в 1950г. Из мытой редиски, их бытовое Ha3Bainie-«radish bacillus», что означает «палочка редиски». Позднее эти бактерии культивировали из почвы и других овощей.
Выделяют из слюны и промывных вод желудка человека.
М.triviale. Первое описание вида принадлежит Kubica и соавт., 1970.
Выделяется из слюны и мокроты человека. Колонии на яичных средах имеют шероховатую поверхность, сухие, приподнимающиеся и не образуют пигмента. Не рассматриваются как патогенные.
M.nonchromogenicum. Открыт и описан Tsukamura в 1965г. Выделен от мыши зараженной почвой.
Этот вид микобактерий входит в M.terrae complex, который включает M.terrae, M.triviale и M.nonchromogenicum. Бактерии растут медленно, при температуре от25°С до 37°С, нефотохромогенны. Колонии гладкие и блестящие или шероховатые и матовые. Гидролизуют Твин-80, имеют высокоактивную каталазу.
Эти виды микобактерий являются сапрофитами, которые иногда могут вызывать заболевание человека. Описаны единичные случаи заболеваний легких, а также внелегочные поражения (Т.Ф.Оттен, А.В.Васильев, 2005).
M.ulcerans. Источник описания - Mac Callum и др., 1948г.
Стройные длинные палочки. Рост на яичных питательных средах появляется после 4-х недель инкубации при 30-33°С, колонии прозрачные, выпуклые. По мере старения колонии становятся менее выпуклыми, с неровными краями и шероховатой поверхностью. Появляется желтый пигмент. Температурный оптимум 30-33°С, слабый рост при 25°С, и обычно не растет при 37°С.
Первоначально изолирован от человека с кожным заболеванием в Австралии; та коке выделен был у больных с язвенными поражениями кожи в ^ таких странах;как Мексика, Новая Гвинея, Малазия.
Является причиной кожной инфекции, широко распространенной в странах Центральной Африки, Гане, Уганде, Сенегале. Симптомами заболевания являются образование болезненных эритематозных узелков с последующим развитием некроза и язв. При более глубоких поражениях кожи в процесс вовлекаются периферические нервы и кровеносные сосуды с развитием отеков.
M.phlei. Открыл Möller в 1898г. и назвал Timotheebacillus или Grasbacillus, так как был обнаружен на кормовом злаке Phleum pretense. Описан в 1899г. Lehmann и Neumann и названы Bacterium phlei. Имеет широкое распространение в природе. Обычное название бактерии Тимофеевой травы.
Палочки 1,0-2,0 мкм в длину. На яичных питательных средах колонии имеют темно-желтую или оранжевую окраску, поверхность - морщинистая, рост появляется после 2-5 дней инкубации. Температурный режим 22-52°С.
M.vaccac. Описаны Bönicke и Juhasz в 1964г.
- Київ+380960830922